Gerencie seus cuidados com os animais e use o protocolo
Para usar animais para pesquisa, ensino ou teste, o usuário do animal deve cumprir todas as obrigações associadas a este privilégio. Essas obrigações incluem:
Instalações para cirurgia ARF
Requisitos gerais para cirurgia, sobrevivência e não sobrevivência, para todas as espécies são descritos em um resumo detalhado, "Diretrizes Cirúrgicas Gerais". Um segundo resumo intitulado "Diretrizes cirúrgicas para roedores" descreve informações e requisitos específicos para cirurgia envolvendo roedores de laboratório.
Diretrizes para cirurgia de sobrevivência
A cirurgia de sobrevivência, independentemente da espécie, deve ser realizada assepticamente. Os procedimentos cirúrgicos em espécies não roedoras, maiores que o rato de laboratório, devem ser realizados em instalações cirúrgicas dedicadas (centro cirúrgico ARF). Requisitos gerais para cirurgia, sobrevivência e não sobrevivência, para todas as espécies são descritos em um resumo detalhado, "Diretrizes Cirúrgicas Gerais". Um segundo resumo intitulado “Diretrizes cirúrgicas para roedores” descreve informações e requisitos específicos para cirurgia envolvendo roedores de laboratório. Em geral, a técnica asséptica, anestesia e analgesia adequadas, monitoramento intra-operatório adequado do paciente e provisões para cuidados pós-operatórios são requisitos mínimos para a realização de cirurgia de sobrevivência em todas as espécies. Os princípios da cirurgia asséptica abordam o seguinte: esterilização de instrumentos, preparação do cirurgião, preparação do local da cirurgia e todos os procedimentos cirúrgicos, desde a incisão até o fechamento da pele. O monitoramento da anestesia é fundamental e deve ser documentado em espécies maiores que camundongos e ratos.
Diretrizes de cirurgia de não sobrevivência (terminal, aguda)
Cirurgia de Não Sobrevivência é definida como cirurgia realizada sob anestesia geral e o paciente não se recupera da anestesia. A eutanásia é realizada ao final dos procedimentos cirúrgicos experimentais, geralmente com overdose de anestésico, administrado por via intravenosa. Os procedimentos de não sobrevivência requerem o uso de instrumentos limpos e provisões para o monitoramento adequado da profundidade da anestesia.
Procedimentos menores, como injeções, dosagem oral, observações, pesagem, etc. podem ser realizados nas salas dos animais. O ARF fornece salas de procedimento com anestesia inalatória, câmaras de indução, cones de nariz, dispositivos de eliminação de gases residuais e unidades de recuperação para os procedimentos em que a anestesia pode ser desejável para contenção ou imobilização, como coleta de sangue, biópsias, injeções iv, etc.
O manuseio e a contenção de todos os animais, mas especialmente dos roedores, é uma habilidade desenvolvida a partir da prática e do treinamento adequado. Os animais devem ser contidos de maneira gentil, firme e rápida, a fim de minimizar o potencial de estresse e danos tanto para quem está contido quanto para quem o faz. O ARF oferece workshops práticos para indivíduos que precisam de uma introdução aos métodos de contenção adequados.
Todo alojamento e criação de animais de pesquisa são fornecidos pela equipe do ARF de acordo com o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório. Se um protocolo aprovado pelo IACUC descreve condições de alojamento fora do padrão, o pessoal do ARF deve ser informado sobre a isenção. Um Procedimento Operacional Padrão (POP) deve ser desenvolvido pelo pesquisador, aprovado pelo veterinário do ARF e afixado na sala dos animais. Se o PI assumir a responsabilidade pela criação dos animais, uma folha de registro / registro deve ser afixada na sala que registra as tarefas de criação realizadas pela equipe de pesquisa.
Eutanásia de animais de laboratório
A eutanásia é o ato de induzir uma morte humana. Em animais de laboratório, a eutanásia é mais comumente o ponto final de qualquer experimento. É imperativo que os pesquisadores conduzam a eutanásia respeitando a vida do animal e com o entendimento de que a dor, a ansiedade e o sofrimento devem ser minimizados durante o procedimento. A técnica empregada para a eutanásia deve garantir uma rápida perda de consciência, seguida pela cessação das funções cardíaca e respiratória e, finalmente, pela perda da atividade cerebral. Qualquer que seja o método escolhido, deve-se considerar a redução do estresse e da ansiedade associados ao procedimento. As Diretrizes sobre eutanásia da American Veterinary Medical Association compilaram um relatório em 2020. Este relatório contém diretrizes específicas para cada espécie e métodos aceitáveis de eutanásia. Veja este relatório em: http://www.avma.org/issues/animal_welfare/euthanasia.pdf. Para realizar a eutanásia em animais, o indivíduo deve ser adequadamente treinado e competente no procedimento. Os métodos de eutanásia devem ser detalhados no protocolo de uso e cuidados com animais aprovado pelo IACUC. Os métodos usados devem incluir medidas para garantir que a morte ocorreu; que não há chance do animal se recuperar e recuperar a consciência. O treinamento está disponível por meio do ARF ou do Office of Animal Care and Compliance.
Eutanásia de fetos e neonatos de camundongos e ratos
Fetos de termo tardio e roedores neonatais são capazes de sentir dor e angústia. Devem ser levados em consideração os requisitos adicionais para realizar a eutanásia humanitária de fetos e recém-nascidos a termo. O Conselho Consultivo de Pesquisa Animal do NIH desenvolveu diretrizes para a eutanásia de fetos e neonatos de roedores. Reveja essas recomendações para determinar os métodos aceitáveis de eutanásia para fetos e neonatos de camundongos e ratos.
Eutanásia de roedores usando dióxido de carbono
A asfixia com dióxido de carbono é o método mais comum empregado para a eutanásia de pequenos roedores (por exemplo, camundongos e ratos). Uma metodologia adequada deve ser empregada para reduzir o potencial de ansiedade, angústia e dor associada a altas concentrações de CO2. O NIH Animal Research Advisory Council publicou Diretrizes para eutanásia de roedores usando dióxido de carbono. O ARF publicou essas recomendações como um SOP (Procedimento Operacional Padrão) no ARF perto das estações de CO2. Se CO2 A eutanásia é utilizada em laboratórios de pesquisa, o PI deve solicitar o equipamento adequado ao ARF, e postar o POP disponibilizado pelo ARF.
O Animal Resource Facility autoriza o acesso. O Hospital Universitário emite cartões de identificação e as chaves da HSC Lock Shop Technologies.
O Animal Resource Facility autoriza o acesso. O Hospital Universitário emite cartões de identificação e as chaves da HSC Lock Shop Technologies.
O ARF é responsável por TODAS as compras de animais de pesquisa. TODOS os pedidos de animais e todos os pedidos de animais DEVEM ser feitos APENAS pelo escritório da ARF. Todas as solicitações e consultas para o uso de animais devem ser dirigidas ao escritório da ARF. Os procedimentos para a obtenção de animais são detalhados abaixo:
Para receber animais de outra instituição acadêmica ou de pesquisa, a transferência deve primeiro ser aprovada pelo veterinário assistente do HSC ARF. A aprovação é baseada na determinação do estado de saúde e SPF (Specific Pathogen Free) dos animais. Para concluir esta avaliação, o veterinário HSC ARF deve revisar um Relatório de Vigilância Sanitária, a ser fornecido pela equipe veterinária da instituição de origem. Procedimentos de transferência de animais:
Todos os animais mantidos dentro do ARF devem ser mantidos em um protocolo de uso e cuidados com animais aprovado pelo IACUC. Se você deseja transferir animais de um protocolo para outro, você deve saber quais são os números do protocolo dos animais. Se os animais estão sendo transferidos de um PI para outro, em protocolos aprovados, os nomes dos PIs e números de protocolo devem estar disponíveis.
A escolha do modelo animal adequado será baseada em vários fatores relacionados à natureza da doença ou problema de saúde. O papel da genética, suscetibilidade a doenças, tamanho; e semelhanças anatômicas e fisiológicas devem ser consideradas na escolha de um animal que seja mais adequado aos objetivos da pesquisa. A equipe veterinária está disponível para consulta para auxiliar o pesquisador a fazer a escolha adequada. Os princípios da pesquisa com animais humanos ditam que o pesquisador escolha a espécie menos senciente disponível que seja apropriada para os objetivos da pesquisa.
Camundongos e ratos tornaram-se os modelos animais mais comuns na pesquisa biomédica desde a conclusão dos projetos do genoma humano, do camundongo e do rato. Os seguintes sites são recomendados para disponibilidade de genótipos e informações sobre fenótipos. Esses sites contêm informações que são úteis ao decidir sobre um modelo animal apropriado:
O Programa de Pesquisa Animal do HSC está registrado como um centro de pesquisa no USDA (85-R-0014), tem uma Carta de Garantia em arquivo com PHS / OLAW (A3350-01) e é totalmente credenciado pela Associação para Avaliação e Credenciamento de Laboratory Animal Care International (AAALAC Accreditation Unit File No. 000222).
O ARF é credenciado pela AAALAC e cumpre todas as disposições da política do PHS sobre o cuidado e uso de animais de laboratório, o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório e a Lei de Bem-Estar Animal e regulamentos de implementação.
Para a apresentação de propostas ao NIH que envolvam animais vertebrados, a "Planilha para Revisão da Seção de Animais Vertebrados (VAS)" (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASchecklist.pdf) devem ser referenciados para garantir que as informações necessárias sobre o programa animal sejam fornecidas. O NIH publicou orientações adicionais para a preparação do VAS (http://grants.nih.gov/grants/olaw/VASfactsheet_v12.pdf), datado de 18 de janeiro de 2012. Além disso, o ARF fornece um modelo padrão para apoiar as informações solicitadas nos parágrafos 3-5 deste Lista de verificação do padrão ARF.
O UNM HSC mantém 40,000 pés quadrados. do espaço da instalação de recursos animais (ARF), dirigido por Kevin O'Hair, DVM, que é certificado pelo Conselho de Medicina de Animais de Laboratório (ACLAM) e membro do corpo docente do departamento de Patologia da Escola de Medicina. O ARF está localizado no térreo contíguo do Prédio de Ciências Médicas Básicas (BMSB) e do Centro de Pesquisas Biomédicas (BRF). O ARF é mantido como uma instalação livre de patógenos específicos (SPF) essencial para o atual estado da pesquisa científica e contém instalações de barreira especializadas para a reprodução de ratos de laboratório. O ARF também fornece suporte técnico e veterinário para todos os projetos educacionais e de pesquisa que utilizam animais de laboratório. O ARF abrange áreas de alojamento de animais e áreas de uso especial, como salas de tratamento, laboratórios de procedimentos, imagens, áreas de pesquisa de risco biológico e de exposição a produtos químicos, salas de cirurgia e salas de alojamento de roedores de barreira. O programa de cuidados com os animais é apoiado por Christie Wilcox, AS, RLATG, Gerente de Operações, e uma equipe de seis técnicos em animais de laboratório.
Instalações especializadas:
Todos os animais do Centro de Ciências da Saúde estão alojados nas instalações gerenciadas pela Animal Resources Facility (ARF). As salas de alojamento de animais estão sob controle de temperatura e umidade. A instalação é dirigida por uma veterinária em tempo integral, Tara G. Ooms Konecny, DVM, DACLAM (diretora da ARF e veterinária assistente) e composta por um supervisor da instalação (RLATG), 3 técnicos seniores em cuidados com animais (LAT) e 7 técnicos em cuidados com animais; o Diretor da ARF ou um veterinário clínico de emergência está sempre disponível. A equipe de cuidados com os animais realiza procedimentos de criação de rotina (por exemplo, limpeza da gaiola, alimentação e água) e verifica os animais diariamente para avaliar sua condição. As fichas da sala de observação clínica são preenchidas diariamente pela equipe de cuidados com os animais e enviadas ao gerente de operações. Esses relatórios são encaminhados ao veterinário quando as preocupações clínicas são relatadas. A equipe do laboratório monitora os animais quando os tratamentos são administrados e as pontuações individuais das condições pós-procedimento dos animais são registradas quando determinado necessário com base na morbidade esperada e conforme exigido pelos respectivos protocolos aprovados pelo IACUC. A equipe veterinária monitora os animais em suas gaiolas, quinzenalmente ou imediatamente quando problemas clínicos são relatados por cuidadores de animais ou equipe de laboratório. se os animais apresentarem qualquer indicação de infecção, doença ou sofrimento, a equipe veterinária consultará o pessoal do laboratório para recomendar antibióticos, analgésicos ou outros produtos farmacêuticos/cuidados de suporte apropriados. O veterinário pode intervir ou recomendar a eutanásia com base em questões de bem-estar animal.
O diretor do ARF é responsável pela administração do Programa de Cuidados Veterinários, supervisão da gestão das instalações, supervisão, treinamento e conformidade. O programa de cuidados veterinários inclui disposições para vigilância sanitária de todos os animais, programas específicos de garantia de qualidade para populações de roedores, um programa de teste de quarentena e diretrizes de tratamento específicas.
O diretor do ARF também fornece revisão e consulta veterinária para todos os protocolos educacionais e de pesquisa submetidos ao Comitê Institucional de Cuidado e Uso de Animais.